Microsoft Word - 10-Agra_17972


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Original Article 

Biosci. J., Uberlândia, v. 30, n. 2, p. 380-386, Mar./Apr. 2014 

EFEITO DA LUZ E DO SISTEMA DE VENTILAÇÃO NATURAL EM 
ABACAXIZEIRO (Bromeliaceae) MICROPROPAGADO 

 
LIGHT EFFECT AND NATURAL VENTILATION SYSTEM ON PINEAPPLE 

(Bromeliaceae) MICROPROPAGATED 
 

Adriano Bortolotti da SILVA1; Vinicius Rodrigues Silva CORREA2†;  
Aluísio Hideki TOGORO2; Juliana Aparecida dos Santos SILVA2 

1. Engenheiro Agrônomo, Professor, Doutor, Faculdade de Agronomia, Universidade José do Rosário Vellano – UNIFENAS, Alfenas, 
MG, Brasil. adriano.silva@unifenas.br; 2. † in memoria do autor; 3. Alunos de graduação da Faculdade de Agronomia - UNIFENAS, 

Alfenas, MG, Brasil 
 

RESUMO: O emprego de luz natural e do sistema de micropropagação em ventilação natural proporciona maior 
irradiância e trocas gasosas no cultivo in vitro de plantas, ocasionando alterações na anatomia foliar e possibilitando um 
cultivo mais próximo ao fotoautotrófico. O presente trabalho teve por objetivo avaliar o crescimento e anatomia foliar de 
plantas de abacaxi cultivadas in vitro em dois sistemas de micropropagação (convencional e ventilação natural), com as 
plantas mantidas em ambiente com luz natural e artificial, e em meio de cultura com diferentes concentrações de sacarose. 
Os tratamentos constaram de diferentes concentrações de sacarose (0; 15; 30 e 45 g.L-1) em combinação com dois sistemas 
de micropropagação (convencional e ventilação natural), mantidos sob luz natural. Foram realizados dois tratamentos 
controle adicionais constando de sistemas de micropropagação (convencional e ventilação natural), acrescido de 30 g.L-1 
de sacarose, sendo o cultivo realizado em sala de crescimento com luz e temperatura controlada. Maior crescimento in 
vitro foi observado em sistema de micropropagação com ventilação natural, em meio de cultura contendo 30 g.L-1 de 
sacarose, e com as plantas mantidas sob luz natural. A micropropagação em ventilação natural, com as plantas sob luz 
natural, promoveu alterações na anatomia foliar que proporcionaram maior espessura do parênquima clorofiliano durante o 
cultivo in vitro. A luz natural em combinação com o sistema de micropropagação em ventilação natural proporciona maior 
acumulo de biomassa e melhores características de anatomia foliar. 

 
PALAVRAS-CHAVE: Ananas. Luz natural. Trocas gasosas. Cultura de tecidos. 

 
INTRODUÇÃO 

 
A aclimatização é uma das fases mais 

limitantes da micropropagação devido basicamente 
ao estresse hídrico, causado pela transferência do 
cultivo in vitro para o ex vitro, que tem sido relatado 
como a principal causa de altas taxas de perdas, 
desta fase (BARBOZA  et al., 2006). 

A alta umidade do cultivo in vitro e a baixa 
irradiância são os principais fatores envolvidos com 
a desorganização dos tecidos, baixo funcionamento 
dos estômatos e a fina camada de cera epicuticular 
na anatomia foliar de plantas produzidas por cultura 
de tecidos, levando ao baixo controle da perda de 
água, quando são submetidas ao ambiente natural, 
com aumento da demanda evaporativa (ALBANY et 
al., 2005; DECCETTI  et al., 2008; SILVA, et al., 
2008). 

O emprego de luz natural é uma forma de 
aumentar a intensidade luminosa do cultivo in vitro. 
A alta irradiância altera a anatomia foliar, 
possibilitando maior diferenciação e organização 
dos tecidos (ERIG; SCHUCH, 2005), maior 
controle estomático (SILVA et al., 2008), o que 
pode reduzir as perdas durante a fase de 
micropropagação. Estudos com de aumento da 

irradiância têm sido relatados na micropropagação 
fotoautrófica (LEE et al., 2000; FUENTES et al., 
2005; KHAN et al., 2003). 

Outra forma de possibilitar a 
micropropagação fotoautotrófica seria o cultivo in 
vitro com o emprego de tampas ou frascos que 
permitam trocas gasosas, o qual é denominado de 
sistema de ventilação natural (ERIG; SCHUCH, 
2005). Os efeitos benéficos da ventilação natural são 
devido a múltiplas interações entre redução relativa 
umidade in vitro (MILLS; TAL, 2004), o aumento 
da trocas gasosas com a atmosfera exterior (MILLS 
et al., 2004) e diminuição da disponibilidade de 
água. Ambos os fatores, luz natural e sistema de 
ventilação natural vem sendo empregados no intuito 
de aumentar a taxa fotossintética in vitro,  visando 
produzir plantas mais rústicas e reduzindo perdas da 
micropropagação. 

Neste contexto, o presente trabalho teve por 
objetivo avaliar o crescimento e anatomia foliar de 
plantas de abacaxi cultivadas in vitro em dois 
sistemas de micropropagação (convencional e 
ventilação natural), com as plantas mantidas em 
ambiente com luz natural e artificial, e em meio de 
cultura com diferentes concentrações de sacarose.  

 

Received: 17/09/12 
Accepted: 05/06/13 



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Efeito da luz...  SILVA, A. B. et al. 

Biosci. J., Uberlândia, v. 30, n. 2, p. 380-386, Mar./Apr. 2014 

MATERIAL E MÉTODOS 
 
O presente trabalho foi conduzido no 

Laboratório de Biotecnologia Vegetal da 
Universidade José do Rosário Vellano 
(UNIFENAS), Alfenas-MG. As plantas foram 
obtidas através de cultura de gemas axilares de 
abacaxi (Ananas comosus L. cv Imperial), as quais 
foram inoculadas em meio contendo sais do meio 
MS (MURASHIGUE; SKOOG, 1962); 1,0 mg.L-1 
de BAP; 0,1 mg.L-1 de ANA; 30 g.L-1 de sacarose, 
solidificado com 6 g.L-1 de ágar e pH ajustado para 
5,8 antes da autoclavagem a 1210C por 20 minutos, 
mantidos em sala de crescimento por 60 dias. 

Para a montagem do experimento, as plantas 
obtidas, a partir das gemas axilares, foram 
subcultivadas por três vezes, no meio de cultura 
descrito anteriormente, visando a obtenção do 
número necessário de plantas. Antes da inoculação, 
as plantas foram uniformizadas com 1 cm de 
comprimento e transferidas de acordo com os 
diferentes tratamentos. Os tratamentos constaram de 
diferentes concentrações de sacarose (0; 15; 30 e 45 
g.L-1) em combinação com dois sistemas de 
micropropagação (convencional e ventilação 
natural), sendo mantidos em casa de vegetação, sob 
condição de luz natural. Foram realizados dois 
tratamentos controle adicionais constando dos 
sistemas de micropropagação (convencional e de 
ventilação natural), em meio de cultura contendo 30 
g.L-1 de sacarose, mantidos em sala de crescimento, 
sob condição de luz artificial.            

Para todos os tratamentos, o meio de cultura 
constou dos sais do MS, o pH foi ajustado para 5,8, 
e solidificado com o emprego de 7 g.L-1 de ágar. 
Foram distribuídos 40 mL de meio de cultura em 
frascos de 250 mL, os quais foram identificados de 
acordo com cada tratamento, e autoclavados a 120 
0C por 20 minutos. Nos tratamentos com plantas 
crescendo sob luz natural, o cultivo foi mantido em 
casa de vegetação, coberta com Sombrite® 50%, 
revestida com plástico agrícola, apresentando 37,5 
0C de temperatura máxima e 14 0C de mínima, 
sendo a média do período em torno dos 26 0C, 
umidade relativa variando de 35 a 70% e irradiância 
entre 35 a 148 W.m-2. Os tratamentos adicionais 
foram mantidos em sala de crescimento com 
temperatura de 24 ± 2 0C, intensidade luminosa de 
30 W.m-2 e 16 horas de fotoperíodo. 

No sistema de micropropagação com 
ventilação natural foram empregadas duas 
membranas de filtro (Milli Seal, Millipore, Tókio, 
Japão) com poros de 0,5 µm usadas para cobrir um 
par de furos (10 mm de diâmetro) das tampas nos 
frascos de cultivo. 

Após 60 dias de cultivo, as plantas foram 
avaliadas nas seguintes características: comprimento 
da parte aérea, massa fresca e seca da planta. Para 
anatomia foliar foi avaliado a espessura foliar, da 
epiderme superior e inferior, do parênquima 
clorofiliano e aqüífero, diâmetro polar e equatorial 
dos estômatos. 

As plantas utilizadas nos estudos 
anatômicos foram coletadas e conservadas em 
álcool 70o GL. Os cortes das seções foliares foram 
realizados à mão livre. As seções transversais, 
foram clarificadas em solução a 1% de hipoclorito 
de sódio e, em seguida, lavadas em água destilada e 
coradas com o corante azul de astra-safranina. As 
lâminas foram montadas em glicerina 50%, 
seguindo a metodologia descrita por Kraus & 
Arduin (1997). A partir das seções transversais, com 
o auxílio de ocular micrométrica, foram realizadas 
medições da espessura dos tecidos no terço mediano 
de cada folha. Os tratamentos foram compostos por 
4 repetições com 4 plantas por parcela, sendo 
avaliada uma folha de cada parcela, totalizando 16 
laminas foliares por tratamento 

 Os cortes paradérmicos foram 
realizados na face abaxial, na região mediana das 
folhas e a safranina hidroalcoólica 1% foi usada 
como corante na montagem das lâminas. O diâmetro 
polar e equatorial dos estômatos foi obtido com 
emprego de ocular micrométrica. Em cada folha 
avaliada, foram medidos 3 estômatos para obter o 
diâmetro polar e equatorial. As fotomicrografias 
foram realizadas utilizando-se um fotomicroscópio 
OLYMPUS BX – 60. 

O delineamento foi o de blocos casualizados 
(DBC), constando de um fatorial de 4 
(concentrações de sacarose) x 2 sistemas de 
micropropagação (convencional e ventilação 
natural), mantidos sob luz natural, resultando em 8 
tratamentos. Foram realizados dois tratamentos 
controle adicionais constando de sistema de 
micropropagação (convencional e ventilação 
natural), mantidos em luz artificial, totalizando 10 
tratamentos, com 4 repetições e 4 plantas por frasco, 
sendo realizada a análise conjunta dos dados. A 
análise de variância foi realizada com o emprego do 
programa estatístico SISVAR (FERREIRA, 2011) e 
as médias foram comparadas com o teste Skoot & 
Knott, a 5% de probabilidade. 

 
RESULTADOS E DISCUSSÃO 

 
Houve interação significativa entre o fator 

sacarose e os sistemas de micropropagação 
(convencional e ventilação natural), com as plantas 
mantidas em luz natural, para todas as variáveis em 



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estudo. Maior comprimento da parte aérea foi 
observado com as plantas mantidas no ambiente de 
sala de crescimento em ambos os sistemas de 
micropropagação (Tabela 1). Entretanto, bom 
desempenho nesta variável foi observado em plantas 
cultivadas em ventilação natural, em meio de cultura 
com 30 0u 45 g.L-1 de sacarose, sob luz natural, 
sendo superior quando comparado com as plantas 

em sistema de micropropagação convencional em 
luz natural (Tabela 1). Mills et al. (2004) relataram 
que maior crescimento de plantas de jojoba foi 
obtido em ventilação natural em sala de crescimento 
quando comparado com a micropropagação 
convencional, em meio de cultura contendo 
sacarose. 

 
Tabela 1. Comprimento da pare aérea (CPA), massa fresca (MFP) e seca (MSECA) da planta em função dos 

diferentes tratamentos. 
Sacarose 

(g.L-1) 
CPA (cm) MFP (g) MSECA (g) 

VN(1) Convencional (2) VN Convencional VN Convencional 

L
u

z 
n

at
u

ra
l 0 2,87 Da 2,50 Db 0,98 Ca 0,99 Ea 0,08 Ca 0,04 Ca 

15 6,90 Cb 7,40 Ba 1,97 Ba 1,73 Da 0,18 Ba 0,12 Bb 
30 9,42 Ba 2,82 Db 1,74 Bb 2,18 Ba 0,28 Aa 0,17Ab 
45 9,37 Ba 5,95 Cb 1,70  Bb 2,21Ba 0,26 Aa 0,17 Ab 

Sala cresc.(3) 10,94 A 10,44 A 2,10 A 2,42 A 0,19 B 0,19 A 
CV (%) 2,88 4,75 6,50 

Médias seguidas pela mesma letra maiúscula na vertical e minúscula na horizontal não diferem entre si pelo teste de Skoot & Knott, a 
5% de probabilidade. Ventilação Natural (1); Micropropagação Convencional(2); Tratamentos adicionais, micropropagação convencional 
e ventilação natural, mantido na sala de crescimento, em meio de cultura contendo 30g.L-1 de sacarose (3).  

 
A micropropagação em sala de crescimento 

proporcionou maior acumulo de massa fresca das 
plantas (Tabela 1). Este fato pode ser atribuído as 
condições ambientais da sala de cultivo com 
temperatura amena e baixa irradiância. Em 
condições de luz natural, a micropropagação 
convencional apresentou plantas com maior massa 
fresca quando comparado com a ventilação natural 
(Tabela 1). Este resultado já era esperado pela maior 
umidade relativa do ar devido a vedação total dos 
frascos, no cultivo in vitro, possibilitando maior 
acumulo de água pelos tecidos, o qual pode gerar 
distúrbios fisiológicos como hiperidricidade. 
Entretanto, no presente estudo não foram 
observadas plantas com hiperidricidade. A 
micropropagação em ventilação natural pode 
prevenir este distúrbio fisiológico por reduzir a 
unidade relativa do frasco de cultivo. Ivanova e Van 
Staden (2010) afirmaram que a ventilação natural 
eliminou os problemas com hiperidricidade em 
plantas de Aloe polyphylla. 

A micropropagação em ventilação natural, 
com as plantas mantidas sob luz natural, em meio de 
cultura contendo 30 ou 45 g.L-1 de sacarose, 
promoveu maior acumulo de massa seca (Tabela 1). 
Aumento da massa seca tem sido relatado em 
cultivo in vitro sob alta irradiância de coco 
(TALAVERA et al., 2005), mandioca (JORGE et 
al., 2001), eucalipto (KHAN et al., 2003),  e abacaxi 

(SILVA et al., 2008). Respostas semelhantes em 
acumulo de massa seca foram observadas também 
na micropropagação em ventilação natural com 
tomate e couve flor (KANECHI et al., 1998; 
MILLS; TAL, 2004). Mills et al. (2004) verificaram 
maior acumulo de massa seca em plantas crescendo 
em ventilação natural quando comparado a 
micropropagação convencional. O aumento das 
trocas gasosas no sistema de micropropagação em 
ventilação natural pode estar relacionado com 
incremento da taxa fotossintética neste sistema, 
podendo ainda causar aumento dos cloroplastos e 
melhor organização da grana (MAJADA et al., 
2002).  

A luz natural em combinação com sistema 
de micropropagação convencional ou de ventilação 
natural promoveu maior espessura da epiderme 
adaxial e adaxial quando comparado com os 
sistemas de micropropagação mantidos em sala de 
crescimento (Tabela. 2). O comportamento da 
epiderme não evidenciou nenhum outro padrão de 
comportamento em relação aos fatores em estudo. O 
emprego da luz natural na micropropagação de 
plantas gera alterações morfológicas na anatomia 
foliar das plantas e o primeiro tecido a sofrer esta 
alteração adaptativa é a epiderme, sendo que em 
ambientes com alta irradiância observam-se 
epidermes mais espessas (SILVA et al., 2008). 

 



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Tabela 2. Espessura da epiderme adaxial (Ead) e abaxial (Eab), espessura do parênquima aqüífero (Paq) em 
função dos diferentes tratamentos. 

Sacarose 
(g.L-1) 

Ead (µm) Eab (µm) Paq (µm) 
VN(1) Convencional (2) VN Convencional VN Convencional 

L
u

z 
n

at
u

ra
l 0 20,60 Ab 26,97 Aa 18,40 Bb 20,60 Aa 249,63 Db 298,75 Da 

15 17,09 Cb 20,27 Ca 18,03 Bb 19,09 Ba 279,77 Ab 360,13 Ba 
30 20,60 Aa 17,29 Db 19,20 Aa 18,40 Bb 249,63 Db 397,28 Aa 
45 17,06 Cb 24,00 Ba 18,40 Bb 20,60 Aa 259,88 Bb 360,37 Ba 

Sala cresc.(3) 14,23 D 13,09 E 17,30 C 17,20 C 253,98 C 350,44 C 
CV (%) 0,75 0,86 0,97 

Médias seguidas pela mesma letra maiúscula na vertical e minúscula na horizontal não diferem entre si pelo teste de Skoot & Knott, a 
5% de probabilidade. Ventilação Natural (1); Micropropagação Convencional(2); Tratamentos adicionais, micropropagação convencional 
e ventilação natural, mantido na sala de crescimento, em meio de cultura contendo 30g.L-1 de sacarose (3).  

 
O parênquima aqüífero mostrou-se mais 

espesso em condições de micropropagação 
convencional do que em ventilação natural (Tabela 
2). Provavelmente, o efeito da total vedação dos 
frascos de cultivo na micropropagação convencional 
e a maior umidade relativa desse ambiente, 
proporcionou maior acúmulo de água por este tecido 
especializado. A ventilação natural pode diminuir a 
umidade relativa, bem como a disponibilidade de 
água do cultivo in vitro, e aumentar as trocas 
gasosas (PARK et al., 2004; CASANOVA et al., 
2008; IVANOVA; STADEN, 2010), resultando, no 
presente trabalho, provavelmente na menor 
espessura do parênquima aqüífero nos tratamentos 

de ventilação natural quando comparado com os  de 
micropropagação convencional (Tabela 2). 

O parênquima clorofiliano, tecido 
responsável pela fotossíntese, apresentou maior 
espessura com o emprego do sistema de 
micropropropagação em ventilação natural com as 
plantas sob luz natural, em meio de cultura 
acrescido de 30g.L-1 de sacarose, sendo seguido pelo 
tratamento de ventilação natural mantido em sala de 
crescimento (Tabela 3). Outro tratamento que 
apresentou bom desempenho foi o de 
micropropagação convencional, sob luz natural, 
acrescido com 30 ou 45 g.L-1 de sacarose. 

 
Tabela 3. Espessura do parênquima clorofiliano (Pcl) e espessura foliar total (Ef) em função dos diferentes 

tratamentos. 
Sacarose 

(g.L-1) 
Pcl (µm) Ef (µm) 

VN(1) Convencional (2) VN Convencional 

L
u

z 
n

at
u

ra
l 0 290,96 Ca 279,56 Bb 583,25 Db 630,18 Da 

15 274,96 Da 273,17 Ba 594,65 Cb 674,60 Ca 
30 373,62 Aa 293,88 Ab 654,40 Ab 719,32 Aa 
45 293,75 Ca 300,31 Aa 594,53 Cb 702,40 Ba 

Sala cresc.(3) 330,53 B 235,04 C 610,30 B 620,40 C 
CV(%) 2,34 26,4 

Médias seguidas pela mesma letra maiúscula na vertical e minúscula na horizontal não diferem entre si pelo teste de Skoot & Knott, a 
5% de probabilidade. Ventilação Natural (1); Micropropagação Convencional(2); Tratamentos adicionais, micropropagação convencional 
e ventilação natural, mantido na sala de crescimento, em meio de cultura contendo 30g.L-1 de sacarose (3).  

 
A maior espessura do parênquima 

clorofiliano em plantas submetidas à 
micropropagação com ventilação natural e em 
ambiente com luz natural demonstra a plasticidade 
do abacaxizeiro em cultivo in vitro e maior 
capacidade adaptativa. A maior espessura desse 
tecido pode resultar em maior capacidade 
fotossintética. Incremento nas taxas de fotossíntese 
in vitro têm sido relatadas pelo aumento da 
irradiância (KHAN et al., 2003; NGUYEN et 
al.,2001), e possibilidade de trocas gasosas com 

meio ambiente (PARK et al., 2004; CASANOVA et 
al., 2008; IVANOVA; STADEN, 2010). 

A maior espessura de tecido foliar foi 
observada na micropropagação convencional, sob 
luz natural, em meio de cultura com 45 g.L-1 de 
sacarose (Tabela 3). Esse comportamento foi 
influenciado pelo maior acumulo de água pelo 
parênquima aqüífero (Tabela 2). Entretanto, folhas 
mais espessa foram observadas em cultivos sob alta 
irradiância, sendo considerada uma resposta padrão 



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e relacionada com maior sucesso na fase de 
aclimatização (SILVA et al., 2008).  

Maior diâmetro polar e equatorial foi obtido 
em sistema de ventilação natural, sob luz natural, 
em meio de cultura na ausência de sacarose (Tabela. 
4).  Estômatos mais elípticos são relatados como 
mais funcionais, enquanto a forma arredondada está 
associada a estômatos que não apresentam 
funcionamento normal (CAPELLADES et al., 1990; 
KHAN et al., 2003) e menores perdas da 
aclimatização. No presente trabalho, existe a 
tendência da forma mais elíptica nos tratamentos 
sob luz natural (Tabela 4) devido o diâmetro polar 
tender a ser maior que o equatorial. Nos tratamentos 
mantidos em sala de crescimento este 

comportamento foi observado somente em 
ventilação natural (Tabela 4). 

 A ventilação natural proporcionou maior 
controle estomático em espécies como Annona 
glabra (DECCETTI et al., 2008), jojoba (MILLS et 
al., 2004) e Aloe polyphylla (IVANOVA; STADEN, 
2010). O aumento da irradiancia também esta 
relacionado com estômatos mais funcionais no 
cultivo in vitro de diversas espécies (DECETTI et 
al., 2008; SILVA, 2006; KHAN, 2003). Em cortes 
paradérmicos, na superfície inferior da epiderme, 
observaram-se estômatos do tipo tetracítico, 
envolvido por quatro células subsidiárias, duas delas 
paralelas às células guarda, sendo o par restante 
polar e frequentemente menor (Figura 1C).  

 
Tabela 4. Diâmetro polar (Dpolar) e equatorial (Dequatorial) de estômatos em função de diferentes 

tratamentos. 
Sacarose 

(g.L-1) 
Dpolar (µm) Dequatorial (µm) 

VN(1) Convencional (2) VN Convencional 

L
u

z 
n

at
u

ra
l 0 27,59 Aa 26,47 Ab 24,16 Aa 22,18 Cb 

15 25,98 Ba 25,99 Ba 21,20 Ea 21,13 Da 
30 24,61 Da 24,84 Da 23,25 Ca 23,42 Ba 
45 25,31Cb 24,30 Ca 22,17 Da 22,03 Ca 

Sala cresc.(3) 25,94 B 25,94 Ba 23,93 B 25,29 A 
CV(%) 1,2 0,95 

Médias seguidas pela mesma letra maiúscula na vertical e minúscula na horizontal não diferem entre si pelo teste de Skoot & Knott, a 
5% de probabilidade. Ventilação Natural (1); Micropropagação Convencional(2); Tratamentos adicionais, micropropagação convencional 
e ventilação natural, mantido na sala de crescimento, em meio de cultura contendo 30g.L-1 de sacarose (3).  

 
O parênquima clorofiliano das plantas em 

sistema de ventilação natural, sob luz natural, 
apresentou inúmeros cloroplastídeos, o que pode 
estar relacionado diretamente com maior capacidade 
fotossintética (Figura 1B). Os tecidos sob luz e 
ventilação natural apresentaram boa organização 

celular no mesofilo foliar, bem como sistema 
vascular quando comparado com a micropropagação 
convencional em sala de crescimento (Figura 1A e 
B). 

 

   
 

 

 
Figura 1. Anatomia foliar das plantas cultivadas in vitro em micropropagação convencional em sala de 

crescimento e com meio de cultura com 30 g.L-1 de sacarose (A); e em sistema de ventilação natural, 
sob luz natural, meio de cultura com 30 g.L-1 de sacarose (B); epiderme (ep); sistema vascular (sv); 
parênquima clorofiliano (pcl); parênquima aqüífero (paq). Secções paradérmicas da face abaxial de 
folhas de abacaxizeiro (C), apresentado estômato tetracítico (e), quatro células subsidiárias (cs). 

260µ m 

B 

(sv) 

(ep) 
 

(paq) 

(pcl) 

A 
C 

e cs 

260µ m 44µ m 



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A micropropagação fotoautotrófica testada 
nos tratamentos sem adição de sacarose no meio de 
cultura, não apresentou bom desempenho (Tabela 
1), sendo assim necessária a adição de sacarose no 
meio de cultura para o crescimento in vitro do 
abacaxizeiro. Entretanto, o cultivo mantido em 
condições de luz natural, bem como o de ventilação 
natural, resulta em alterações na anatomia foliar, 
que aproxima este cultivo a micropropagação 
fotoautotrófica. 

CONCLUSÃO 
 
O sistema de micropropagação em 

ventilação natural, acrescido de 30 g.L-1 de sacarose, 
sob luz natural promove o melhor crescimento in 
vitro de plantas de abacaxizeiro, bem como 
alterações positivas na anatomia foliar das plantas, 
sendo superior a micropropagação convencional. 

 
 

ABSTRACT: The natural light application on natural ventilation micropropagation systems makes a bigger 
irradiance and gaseous exchanges on in vitro culture, occasioning foliar anatomy alterations and possibiliting the culture 
more close of phothoautrofic conditions. The present study had the purpose to evaluate growth in vitro and foliar anatomy 
of pineapple plants (Ananas comosus L.) incubated in natural or artificial light, using two micropropagation systems 
(conventional and natural ventilation) with different sucrose concentrations. The treatments were composed of different 
sucrose concentrations (0; 15; 30 e 45 g. L-1) combined with different micropropagation systems (conventional and natural 
ventilation), incubated under natural light. Two additional treatments were made with conventional and natural ventilation 
micropropagation system incubated on growth room with control of irradiance and temperature. The biggest in vitro 
growth were observed on natural ventilation under natural light with 30 g. L-1 of sucrose on culture media, as well as the 
foliar anatomy alterations that made bigger chlorophyll parenquimata during in vitro culture. Natural ventilation 
micropropagation system in combination with natural light produces the greatest biomass production and the better foliar 
anatomy. 

 
KEYWORDS: Ananas. Natural light. Gas exanges . Tissue culture. 

 
 
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